Вестник БГУ. Медицина и фармация
Библиографическое описание:
, , ЖИЗНЕСПОСОБНОСТЬ КЛЕТОК КЕРАТИНОЦИТОВ ЛИНИИ HaCaT И ФИБРОБЛАСТОВ ЛИНИИ 1608 hT ПРИ ВОЗДЕЙСТВИИ ГИДРОЛАТОВ РАСТЕНИЙ-ЭНДЕМИКОВ РЕСПУБЛИКИ БУРЯТИЯ // Вестник БГУ. Медицина и фармация. - 2026. №1. . - С. 36-42.
Заглавие:
ЖИЗНЕСПОСОБНОСТЬ КЛЕТОК КЕРАТИНОЦИТОВ ЛИНИИ HaCaT И ФИБРОБЛАСТОВ ЛИНИИ 1608 hT ПРИ ВОЗДЕЙСТВИИ ГИДРОЛАТОВ РАСТЕНИЙ-ЭНДЕМИКОВ РЕСПУБЛИКИ БУРЯТИЯ
Финансирование:
Коды:
Аннотация:
Современная фармакология рассматривает эндемичные растения в качестве ценного источника биологически активных веществ с уникальным профилем действия. В настоящей работе проведено экспериментальное исследование in vitro, направленное на изучение влияния гидролатов полыни селитряной Artemisia nitrosa на клетки кожи человека. Гидролаты получены методом паровой дистилляции в лаборатории инновационной фармацевтики Бурятского государственного университета. В качестве клеточных моделей использованы иммортализованные линии кератиноцитов (HaCaT) и дермальных фибробластов (1608 hT). С помощью микроскопии и количественного анализа плотности клеточной популяции оценили состояние клеток при внесении гидролата в различных концентрациях (5–20%). Установили, что для кератиноцитов исследуемое средство не цитотоксично во всем диапазоне концентраций. Напротив, фибробласты проявили чувствительность к концентрациям 15 и 20%, что выражалось в снижении плотности моно- слоя, эти концентрации имели цитотоксический эффект. Выявленная избирательность (подавление роста фибробластов при сохранении жизнеспособности кератиноцитов) позволяет рассматривать гидролат Artemisia nitrosа как перспективный компонент для моду- ляции процессов рубцевания.
Ключевые слова:
эндемичные растения, Artemisia nitrosa, гидролат, цитостатический эффект, фибробласты, кератиноциты линии HaCaT, клеточное культивирование, регенеративная медицина, пролиферация, рубцевание.
Список литературы:
Волова Т. Г. Шишацкая Е. И., Миронов П. В. Материалы для медицины, клеточной и тканевой инженерии: электронное учебное пособие. Красноярск: ИПК СФУ, 2009. 262 с.
Gonzalez-Burgos E., Gomez-Serranillos M. P. Artemisia genus: bioactive compounds and their pharmacological profiles. Frontiers in Pharmacology. 2021; 12: 642.
El Ghalbzouri A., Lamme E., Ponec M. Crucial role of fibroblasts in regulating epidermal morphogenesis. Cell Tissue Res. 2002; 310(2): 189–199.
Boehnke K., Mirancea N., Pavesio A. et al. Effects of fibroblasts and keratinocytes on the reorganization of the extracellular matrix in a human organotypic skin equivalent. Experimental Dermatology. 2007; 16: 1–12.
Намзалов Б. Б., Жигжитжапова С. В., Намзалов М. Б. О новой находке полыни селитряной Artemisia nitrosa Web ex Stechm. ― редкого вида во флоре Забайкалья // Вестник Бурятского государственного университета. Биология. География. 2018. № 1. С. 87–91.
Schäfer M., Werner S. Transcriptional control of wound repair. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 2007; 23: 69–93.
Boukamp P., Petrussevska R.T., Breitkreutz D. et al. Normal keratinization in a spontaneously immortalized aneuploid human keratinocyte cell line. Journal of Cell Biology. 1988; 106: 761–771.
Panchision D. M. The role of oxygen in regulating neural stem cells in development and disease. Journal of Cellular Physiology. 2009; 220; 3: 562–568.
Kalfon T., Glanz L. Differential metabolic responses of keratinocytes and fibroblasts to oxidative stress. Experimental Dermatology. 2021; 30: 123–135.
O’Brien P. J., Chan H. M. Keratinocytes and fibroblasts differ in their metabolism of and response to xenobiotics. Toxicology in Vitro. 2005; 19: 605–613.
Limandjaja G. C., van den Broek L. J., Breetveld M. et al. Characterization of in vitro reconstructed human normotrophic, hypertrophic, and keloid scar models. Tissue Eng Part C Methods. 2018; 24(4): 242–253.
Verhaegen P. D., van Zuijlen P. P., Pennings N. M. et al. Differences in collagen architecture between keloid, hypertrophic scar, normotrophic scar, and normal skin: An objective histopathological analysis. Wound Repair and Regeneration. 2009; 17: 649–656.
Gonzalez-Burgos E., Gomez-Serranillos M. P. Artemisia genus: bioactive compounds and their pharmacological profiles. Frontiers in Pharmacology. 2021; 12: 642.
El Ghalbzouri A., Lamme E., Ponec M. Crucial role of fibroblasts in regulating epidermal morphogenesis. Cell Tissue Res. 2002; 310(2): 189–199.
Boehnke K., Mirancea N., Pavesio A. et al. Effects of fibroblasts and keratinocytes on the reorganization of the extracellular matrix in a human organotypic skin equivalent. Experimental Dermatology. 2007; 16: 1–12.
Намзалов Б. Б., Жигжитжапова С. В., Намзалов М. Б. О новой находке полыни селитряной Artemisia nitrosa Web ex Stechm. ― редкого вида во флоре Забайкалья // Вестник Бурятского государственного университета. Биология. География. 2018. № 1. С. 87–91.
Schäfer M., Werner S. Transcriptional control of wound repair. Annual Review of Cell and Developmental Biology. 2007; 23: 69–93.
Boukamp P., Petrussevska R.T., Breitkreutz D. et al. Normal keratinization in a spontaneously immortalized aneuploid human keratinocyte cell line. Journal of Cell Biology. 1988; 106: 761–771.
Panchision D. M. The role of oxygen in regulating neural stem cells in development and disease. Journal of Cellular Physiology. 2009; 220; 3: 562–568.
Kalfon T., Glanz L. Differential metabolic responses of keratinocytes and fibroblasts to oxidative stress. Experimental Dermatology. 2021; 30: 123–135.
O’Brien P. J., Chan H. M. Keratinocytes and fibroblasts differ in their metabolism of and response to xenobiotics. Toxicology in Vitro. 2005; 19: 605–613.
Limandjaja G. C., van den Broek L. J., Breetveld M. et al. Characterization of in vitro reconstructed human normotrophic, hypertrophic, and keloid scar models. Tissue Eng Part C Methods. 2018; 24(4): 242–253.
Verhaegen P. D., van Zuijlen P. P., Pennings N. M. et al. Differences in collagen architecture between keloid, hypertrophic scar, normotrophic scar, and normal skin: An objective histopathological analysis. Wound Repair and Regeneration. 2009; 17: 649–656.
Статья.pdf